酶聯(lián)免疫檢測試劑盒原理：

酶聯(lián)免疫檢測試劑盒DRGT采用雙抗體夾心法測定人雄激素結合蛋白（ABP）水平。用純化的人雄激素結合蛋白（ABP）抗體包被微孔板，制成固相載體，實驗時依次在微孔板中加入樣本及標準品，并加入HRP標記的ABP抗體，形成抗體-抗原-酶標抗體復合物，反復洗滌后加底物TMB顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉化為藍色，再用硫酸終止反應，轉變成黃色。顏色的深淺和樣品中的ABP含量呈正相關。采用酶標儀在450nm波長測定吸光度（OD值），根據(jù)標準曲線，計算測試樣品中ABP濃度。 

實驗材料與試劑配制：

1. 儀器與材料：酶標儀（使用前預熱30分鐘），微量加液器、吸頭、蒸餾水或去離子水，濾紙。

2. 緩沖液使用：加5ul的緩沖液于50ul的樣品中，如果樣品量不夠或者不確定，緩沖液和樣品的混合比例不要小于1:10即可。混勻，靜置1小時備用（如果標本是血清或者血漿，此步驟忽略）。

3. 洗液的配制：按1:100的比例配制洗液備用。

樣品收集、處理及保存：

1. 細胞培養(yǎng)上清：適用于檢測體外培養(yǎng)的細胞分泌性成份。用無菌管收集細胞上清液，以1000×g離心15分鐘，收集上清。

2. 細胞：用PBS反復洗滌細胞3次，調整細胞濃度達到104-106/ml左右，通過反復凍融，使細胞破壞并放出細胞內成份，或者細胞超聲粉碎，離心取上清液檢測。

3. 血清：在室溫下，血液自然凝固，以1000×g離心15分鐘，取上清待測。

4. 血漿：應根據(jù)標本的要求選擇EDTA或檸檬酸鈉作為抗凝劑，混合后靜置10-20分鐘后，以1000×g離心15分鐘，收集上清。

5. 體液：包括胸腹水、腦脊液，分泌物等。使用不含熱原和內毒素的離心管收集，以1000×g離心15分鐘，收集上清。

6. 組織標本：切取組織標本，稱取重量0.5mg，加入500ul的PBS，用手工或勻漿器，或超聲破碎儀將標本勻漿，以2000-3000rmp離心20分鐘，收集上清進行檢測。

7. 樣品中不能含有NaN3，因NaN3抑制辣根過氧化物酶的（HRP）活性。

8. 保存：如果樣品不能立即檢測，應將其分裝，-70 ℃保存，避免反復冷凍。保存過程中如出現(xiàn)沉淀，應再次離心。血液標本盡可能的不要使用溶血或高血脂血。如果血清中含大量顆粒，檢測前先離心或過濾。不要在37℃或更高的溫度加熱解凍。應在室溫下解凍并確保樣品均勻地充分解凍。

酶聯(lián)免疫檢測試劑盒DRGT操作步驟：

1. 取出試劑盒，室溫（20-25℃）放置30分鐘。

2. 分組：取出96孔板，根據(jù)待測樣品數(shù)量加上標準品的數(shù)量決定所需的板條數(shù)，把剩余的板條繼續(xù)冷藏處理。分別設標準品組（6個濃度）、空白孔、待測樣品組。

注：為減少實驗誤差，保證準確性，建議設置復孔。

3. 加樣：依照標準品的順序分別加入50ul的標準品溶液于空白微孔中；空白對照孔加入50ul的蒸餾水；其余微孔中加入 50ul的待測樣本。

4. 加酶標溶液：標準品組、待測樣本組各孔中加入100ul 的酶標溶液（空白對照孔除外）。

5. 溫育：酶標板用封板紙密封后，放入濕盒內于37℃恒溫孵育1小時。

6. 洗板：用稀釋后的洗滌液注滿每孔，靜置15-30s，充分清洗酶標板5次，用吸水紙拍干。

7. 顯色：各孔加入顯色劑A液50ul后，再加入顯色劑B液50ul。

8. 終止：25-37℃下避光反應10-15分鐘，加入50ul終止液。

9. 讀板：在450nm波長讀取各孔的OD值。

注：讀板時必須拭干板底殘留的液體和手指痕跡，讀板時間控制在終止反應后的30分鐘內，以免影響準確性。