實(shí)驗(yàn)步驟：
典型的PCR由
（1）高溫變性模板；
（2）引物與模板退火；
（3）引物沿模板延伸三步反應(yīng)組成一個循環(huán)，通過多次循環(huán)反應(yīng)，使目的DNA得以迅速擴(kuò)增。其要步驟是：
將待擴(kuò)增的模板DNA置高溫下（通常為93℃-94℃）使其變性解成單鏈；
人工合成的兩個寡核苷酸引物在其合適的復(fù)性溫度下分別與目的基因兩側(cè)的兩條單鏈互補(bǔ)結(jié)合，兩個引物在模板上結(jié)合的位置決定了擴(kuò)增片段的長短；
耐熱的DNA聚合酶（Taq酶）在72℃將單核苷酸從引物的3’端開始摻入，以目的基因?yàn)槟０鍙?’→3’方向延伸，合成DNA的新互補(bǔ)鏈。
【產(chǎn)品名稱】斑點(diǎn)叉尾鮰病毒探針法熒光定量PCR試劑盒
【英文名稱】Channel Catfish Virus(CCV)
【產(chǎn)品編號】YSP6533
【包裝規(guī)格】50T
【預(yù)期用途】
產(chǎn)品僅用于科研本產(chǎn)品可用于肉及肉制品中鴨源性成分的定性檢測，所用儀器為實(shí)時熒光PCR儀，可通過實(shí)時擴(kuò)增曲線判斷樣品中是否存在鴨源性成分。
【檢驗(yàn)原理】
本試劑盒采用實(shí)時熒光PCR技術(shù)，針對鴨源性成分核酸序列設(shè)計(jì)特異性引物和熒光探針，通過實(shí)時熒光一步法RT-PCR（Taqman探針法）對鴨源性成分核酸進(jìn)行定性檢測。
*的擴(kuò)增性能:
高性能的UNICONTM Taq DNA聚合酶及優(yōu)化的反應(yīng)體系保證更高的擴(kuò)增效率。以相同量的293T細(xì)胞cDNA為模板，擴(kuò)增β-actin基因，與同類產(chǎn)品相比，UNICONTM qPCR Master Mix擴(kuò)增信號更強(qiáng)，擴(kuò)增效率更高。
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PCR實(shí)驗(yàn)方法步驟：
斑點(diǎn)叉尾鮰病毒探針法熒光定量PCR試劑盒方法
1：在冰浴中，按以下次序?qū)⒏鞒煞旨尤胍粺o菌0.5ml離心管中。     
10×PCR buffer                   

5 μl     dNTP mix （2mM）             
4 μl     引物1（10pM）                 
2 μl     引物2（10pM）                 
2 μl     Taq酶 （2U/μl）               
1 μl     DNA模板（50ng-1μg/μl）  
1 μl      加ddH2O至 50 μl  
視PCR儀有無熱蓋，不加或添加石蠟油。
2：調(diào)整好反應(yīng)程序。將上述混合液稍加離心，立即置PCR儀上，執(zhí)行擴(kuò)增。一般：在93℃預(yù)變性3-5min，進(jìn)入循環(huán)擴(kuò)增階段：93℃ 40s → 58℃ 30s → 72℃ 60s，循環(huán)30-35次，在72℃ 保溫7min。
3：結(jié)束反應(yīng)，PCR產(chǎn)物放置于4℃待電泳檢測或-20℃長期保存。
4：PCR的電泳檢測：如在反應(yīng)管中加有石蠟油，需用100μl進(jìn)行抽提反應(yīng)混合液，以除去石蠟油；否則，直接取5-10μl電泳檢測。
PCR反應(yīng)鑒定——PCR反應(yīng)條件:

熒光定量PCR檢測方法包括以下步驟：
(1)將參照基因與待測目的基因片段等比例連接，克隆到同一個質(zhì)粒載體上，構(gòu)建一種可同時用于參照基因以及待測目的基因擴(kuò)增檢測的標(biāo)準(zhǔn)品，并將所得標(biāo)準(zhǔn)品按照濃度梯度稀釋后同時用于繪制參照基因以及待測目的基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線；
(2)待測樣本與步驟(1)所述標(biāo)準(zhǔn)品經(jīng)同步進(jìn)行實(shí)時熒光定量PCR擴(kuò)增后，目的基因與參照基因按照各自的標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算各自的拷貝數(shù)，計(jì)算待測樣本的目的基因與參照基因拷貝數(shù)比值，即得目的基因的拷貝數(shù)相對定量檢測結(jié)果。
產(chǎn)品僅用于科研其中步驟(1)為：將參照基因與待測目的基因片段等比例連接，克隆到同一個質(zhì)粒載體上，構(gòu)建一種可同時用于參照基因以及待測目的基因擴(kuò)增檢測的標(biāo)準(zhǔn)品，并將所得標(biāo)準(zhǔn)品按照濃度梯度稀釋后同時用于繪制參照基因以及待測目的基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線。
其中所述參照基因?yàn)楸绢I(lǐng)域常規(guī)參照基因，較佳地管家基因，優(yōu)選地為RPPH1的擴(kuò)增區(qū)域，其中所述質(zhì)粒載體為本領(lǐng)域常規(guī)質(zhì)粒載體，較佳地為PCR克隆載體，優(yōu)選地為TA cloning載體，所述TA cloning載體較佳地為pMD18-T載體。其中所述標(biāo)準(zhǔn)品的核酸序列如序列表中SEQ ID NO:6所示。所述的等比例較佳地為1：1。由于標(biāo)準(zhǔn)品中待測目的基因與參照基因的比例為1:1，解決了目前相對標(biāo)準(zhǔn)曲線法應(yīng)用中目的基因與參照基因的濃度比例關(guān)系難以控制的問題，提高HER2基因擴(kuò)增檢測的可靠性。步驟(2)為：待測樣本與步(1)所述標(biāo)準(zhǔn)品經(jīng)同步進(jìn)行實(shí)時熒光定量PCR擴(kuò)增后，目的基因與參照基因按照各自的標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算各自的拷貝數(shù)，計(jì)算待測樣本的目的基因與參照基因拷貝數(shù)比值，即得目的基因的拷貝數(shù)相對定量檢測結(jié)果。
其中所述待測目的基因?yàn)楸绢I(lǐng)域常規(guī)待測目的基因，較佳地為腫瘤或者疾病的特異性基因，更佳地為HER2基因的擴(kuò)增區(qū)域，所述熒光定量PCR擴(kuò)增為本領(lǐng)域常規(guī)熒光定量PCR擴(kuò)增方法，所述熒光定量PCR擴(kuò)增方法較佳地為多通道熒光定量PCR擴(kuò)增，更佳地為雙通道熒光定量PCR擴(kuò)增。
Paracoccidioides brasiliensis巴西副球孢子菌染料法熒光定量PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

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Parainfluenza Virus 1 (PIV-1)副流感病毒1型探針法熒光定量RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

Parainfluenza Virus 2 (PIV-2)副流感病毒2型RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

Parainfluenza Virus 2 (PIV-2)副流感病毒2型染料法熒光定量RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

Parainfluenza Virus 2 (PIV-2)副流感病毒2型探針法熒光定量RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

Parainfluenza Virus 3 (PIV-3)副流感病毒3型RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

Parainfluenza Virus 3 (PIV-3)副流感病毒3型染料法熒光定量RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

Parainfluenza Virus 3 (PIV-3)副流感病毒3型探針法熒光定量RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。

Parainfluenza Virus 4a (PIV-4a)副流感病毒4a型RT-PCR試劑盒非模式菌株研究革蘭氏陽性細(xì)菌，形成芽孢。
斑點(diǎn)叉尾鮰病毒探針法熒光定量PCR試劑盒磷脂酰肌醇-4-激酶2A　P4K2A Polyclonal Antibody

磷脂酰肌醇3激酶調(diào)節(jié)亞基β　PI 3-Kinase p85β Polyclonal Antibody

磷脂酰肌醇3激酶調(diào)節(jié)亞基α　PI 3-kinase p85α Polyclonal Antibody

磷脂酰肌醇3激酶調(diào)節(jié)亞基6　PI3R6 Polyclonal Antibody

磷脂酰肌醇3激酶P85α單克隆抗體　PI3 Kinase P85α Monoclonal Antibody

磷脂酰肌醇3激酶P85α單克隆抗體　PI3 Kinase P85α Monoclonal Antibody

磷脂酰肌醇3-激酶p85α(phosphoTyr607)　PI 3-kinase p85α (phospho Tyr607) Polyclonal Antibody

磷脂拼接酶4　PLS4 Polyclonal Antibody

磷脂拼接酶3　PLS3 Polyclonal Antibody